杭州實(shí)時定量PCR應(yīng)用

Real-time PCR原理：基于探針的化學(xué)法，Real-time PCR應(yīng)用一個或多個熒光標(biāo)記的寡核苷酸探針檢測PCR擴(kuò)增產(chǎn)物；依賴熒光能量共振傳遞（FRET）檢測特異性擴(kuò)增產(chǎn)物，單單檢測特異性擴(kuò)增產(chǎn)物，DNA及RNA定量；基因表達(dá)驗證；等位基因鑒別；SNP分型；病原體和病毒檢測；多重PCR，探針和目標(biāo)片段的特異性結(jié)合產(chǎn)生熒光信號，因此減少了背景熒光和假陽性；探針可標(biāo)記不同波長的熒光基團(tuán)，用于多重PCR反應(yīng)。對于不同的靶序列需要合成不同的探針，原料成本較高。聚合酶鏈反應(yīng)為這些技術(shù)提供了大量的純DNA，有時是單鏈的。杭州實(shí)時定量PCR應(yīng)用

Real-time PCR相對定量中的標(biāo)準(zhǔn)曲線法如何進(jìn)行：主要是相對定量標(biāo)準(zhǔn)品的制作，一般有三種方法：1、比較復(fù)雜的方法：質(zhì)粒，采用Biotnt提供內(nèi)參基因的特異性Real-time PCRmRNA引物，對目的基因進(jìn)行Real-time PCR實(shí)驗，得到PCR擴(kuò)增產(chǎn)物；PCR擴(kuò)增產(chǎn)物轉(zhuǎn)入質(zhì)粒中，得到相對定量的標(biāo)準(zhǔn)品；2、一般采用的方法1：比較強(qiáng)的CDNA模板，3、一般采用的方法：PCR擴(kuò)增產(chǎn)物，如果在方法2中找不到比較強(qiáng)的CDNA模板，則選用PCR產(chǎn)物作為相對定量的標(biāo)準(zhǔn)品也是可以的；需要注意的事項是：PCR產(chǎn)物濃度很高，而Real-time PCR的產(chǎn)物片段比較短，容易在稀釋的過程中造成PCR污染，要注意操作。南京實(shí)時PCR檢測技術(shù)原理熱啟動/冷完成聚合酶鏈反應(yīng)是通過新的雜合聚合酶實(shí)現(xiàn)的，這些酶在環(huán)境溫度下不活躍。

Real-time PCR-傳統(tǒng)定量PCR：1）內(nèi)參照法：在不同的PCR反應(yīng)管中加入已定量的內(nèi)標(biāo)和引物，內(nèi)標(biāo)用基因工程方法合成。上游引物用熒光標(biāo)記，下游引物不標(biāo)記。在模板擴(kuò)增的同時，內(nèi)標(biāo)也被擴(kuò)增。在PCR產(chǎn)物中，由于內(nèi)標(biāo)與靶模板的長度不同，二者的擴(kuò)增產(chǎn)物可用電泳或高效液相分離開來，分別測定其熒光強(qiáng)度，以內(nèi)標(biāo)為對照定量待檢測模板。2）競爭法：選擇由突變克隆產(chǎn)生的含有一個新內(nèi)切位點(diǎn)的外源競爭性模板。在同一反應(yīng)管中，待測樣品與競爭模板用同一對引物同時擴(kuò)增（其中一個引物為熒光標(biāo)記）。

實(shí)時熒光定量PCR：實(shí)時熒光定量PCR技術(shù)有效地解決了傳統(tǒng)定量只能終點(diǎn)檢測的局限，實(shí)現(xiàn)了每一輪循環(huán)均檢測一次熒光信號的強(qiáng)度，并記錄在電腦軟件之中，通過對每個樣品Ct值的計算，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線獲得定量結(jié)果。因此，實(shí)時熒光定量PCR無需內(nèi)標(biāo)是建立在兩個基礎(chǔ)之上的：Ct值的重現(xiàn)性PCR循環(huán)在到達(dá)Ct值所在的循環(huán)數(shù)時，剛剛進(jìn)入真正的指數(shù)擴(kuò)增期（對數(shù)期），此時微小誤差尚未放大，因此Ct值的重現(xiàn)性極好，即同一模板不同時間擴(kuò)增或同一時間不同管內(nèi)擴(kuò)增，得到的Ct值是恒定的。聚合酶鏈反應(yīng)五要素：參加PCR反應(yīng)的物質(zhì)主要有五種即：引物、酶、dNTP、模板和緩沖液。

Real-time PCR鏈?zhǔn)椒磻?yīng)：每次循環(huán)都得加入新的DNA聚合酶，不但操作煩瑣，而且價格昂貴，制約了PCR技術(shù)的應(yīng)用和發(fā)展。耐熱DNA聚合酶-Taq酶的發(fā)現(xiàn)對于PCR的應(yīng)用有里程碑的意義，該酶可以耐受90℃以上的高溫而不失活，不需要每個循環(huán)加酶，使PCR技術(shù)變得非常簡捷、同時也降低了成本，PCR技術(shù)得以大量應(yīng)用，并逐步應(yīng)用于臨床。多重連接依賴探針擴(kuò)增允許用單個引物對擴(kuò)增多個靶標(biāo)，從而避免多重PCR的分辨率限制。引物的設(shè)計注意事項：1，注意引物設(shè)計好后的產(chǎn)物長度。Real-time PCR的較佳產(chǎn)物長度在150-250kb左右（書上說這樣可以增加熒光的敏感度，減少實(shí)驗誤差，但是我對這個說法持懷疑態(tài)度。產(chǎn)物長度越大，SYBR嵌入的越多，這樣才能夠保證之后的熒光值比較可信）。2，不同的管家基因擴(kuò)增效率不同。所以在做整個實(shí)驗之前應(yīng)該做一次檢測擴(kuò)增效率的實(shí)驗。如果擴(kuò)增效率相差太大，就不能使用delt，deltCt法來比較基因表達(dá)量的高低。為了很大限度地減少污染的可能性，調(diào)查人員應(yīng)該為試劑制備、聚合酶鏈反應(yīng)和產(chǎn)品分析預(yù)留單獨(dú)的房間。南京血液熒光定量PCR服務(wù)

Real-time PCR從用途上分可以分為定性分析和定量分析。杭州實(shí)時定量PCR應(yīng)用

聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)的試驗污染：陽性對照，在建立PCR反應(yīng)實(shí)驗室及一般的檢驗單位都應(yīng)設(shè)有PCR陽性對照，它是PCR反應(yīng)是否成功、產(chǎn)物條帶位置及大小是否合乎理論要求的一個重要的參考標(biāo)志。陽性對照要選擇擴(kuò)增度中等、重復(fù)性好，經(jīng)各種鑒定是該產(chǎn)物的標(biāo)本，如以重組質(zhì)粒為陽性對照，其含量宜低不宜高（100個拷貝以下）。但陽性對照尤其是重組質(zhì)粒及高濃度陽性標(biāo)本，其對檢測或擴(kuò)增樣品污染的可能性很大。因而當(dāng)某一PCR試劑經(jīng)自己使用穩(wěn)定。杭州實(shí)時定量PCR應(yīng)用

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