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轉染的注意事項：細胞鋪板密度用于轉染的較佳細胞密度根據不同的細胞類型或應用而異。一般轉染時，貼壁細胞密度為70%-90%，懸浮細胞密度為2×106-4×106細胞/ml時效果較好。確保轉染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉染效率對細胞密度很敏感，所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數目的增加可以增加轉染活性和細胞產量。在三種不同密度進行細胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的，CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應增加了。這些結果說明，對于轉染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質體試劑的量會因細胞密度而異。大部分細胞可以在無血清培養(yǎng)基中幾個小時內保持健康。太原正規(guī)細胞高效轉染試劑哪里買

轉染的注意事項：瞬時和穩(wěn)定表達DNA轉染后，轉入基因的表達可以在1－4天內檢測到。*有一部分轉入細胞的DNA被轉運到細胞核內進行轉錄并較終輸出mRNA到細胞質進行蛋白合成。幾天內，大部分外源DNA會被核酸酶降解或隨細胞分裂而稀釋；一周后就檢測不到其存在了。瞬時表達分析檢測未重組質粒DNA上基因的表達。因此，表達水平與位臵無關，不會受到周圍染色體元件的影響。瞬時表達分析所需的人力和時間比穩(wěn)定表達少，但因為DNA攝入效率和表達水平在不同實驗中差異較大，實驗必須很小心。為了進行穩(wěn)定表達，轉入的基因必須能和細胞同步復制。在轉染的質粒自發(fā)整合到宿主基因組上時就會如此。在一小部分轉染的細胞中，加入的DNA通過重組整合到基因組上。包含整合DNA的細胞很少，必須通過對藥物的抗性篩選進行擴增或通過表型變化進行鑒定。無錫正規(guī)細胞高效轉染試劑直銷價較適合轉染的細胞是經過幾次傳代后達到對數生長期的細胞。

轉染技術：國際上推出了一些陽離子聚合物基因轉染技術，以其適用宿主范圍廣，操作簡便，對細胞毒性小，轉染效率高受到研究者們的青睞。其中樹枝狀聚合物(Dendrimers)和聚乙烯亞胺(Polyethylenimine，PEI)的轉染性能較佳，但樹枝狀聚合物的結構不易于進一步改性，且其合成工藝復雜。聚乙烯亞胺是一種具有較高的陽離子電荷密度的有機大分子，每相隔二個碳個原子，即每“第三個原子都是質子化的氨基氮原子，使得聚合物網絡在任何pH下都能充當有效的“質子海綿”(protonsponge)體。這種聚陽離子能將各種報告基因轉入各種種屬細胞，其效果好于脂質聚酰胺，經進一步的改性后，其轉染性能好于樹枝狀聚合物，而且它的細胞毒性低。大量實驗證明，PEI是非常有希望的基因治好載體。目前在設計更復雜的基因載體時，PEI經常做為中心組成成分。

細胞轉染效率低下的幾個大坑：1.不注意細節(jié)在轉染之前更換一次37℃預溫的培養(yǎng)基，可提高轉染效率。脂質體和DNA/RNA混合物應當一滴一滴地滴下來，從培養(yǎng)皿一邊滴到另一邊，邊滴邊輕搖培養(yǎng)皿，以確保均勻分布和避免局部高濃度。這些都是一些細枝末節(jié)，但是，如果不注意的話，也會造成轉染效率低下。2.細胞狀態(tài)不好細胞狀態(tài)不好，會導致轉染效率低下。一般進行轉染的細胞應該處于對數生長期。如果是貼壁細胞的話，貼壁率應該在70-80%；如果是懸浮細胞的話，應該是6X105個/孔（24孔板），一般是轉染前現在換液，轉染前用無血清培養(yǎng)基或PBS洗細胞一次。轉染的整個過程都不應該有物品。一類是瞬時轉染，一類是穩(wěn)定轉染（很長轉染）。

如何有效提高細胞轉染實驗效率：1.選擇高效的轉染方法不同轉染試劑有不同的轉染方法，但大多大同小異。轉染時應跟據具體轉染試劑推薦的方法，但也要注意，因不同實驗室培養(yǎng)的細胞性質不同，質粒定量差異，操作手法上的差異等，其轉染效果可能不同，應根據實驗室的具體條件來確定較佳轉染條件。2.確保所構建載體的質量。轉染載體的構建（細菌載體，質粒DNA，RNA，PCR產物，寡核苷酸等）也影響轉染結果。細菌載體對特定宿主細胞傳染效率較高，但不同細菌載體有其特定的宿主，有的還要求特定的細胞周期，如逆轉錄細菌需侵染分裂期的宿主細胞，此外還需考慮一些安全問題（如基因污染）。除載體構建外，載體的形態(tài)及大小對轉染效率也有不同的影響，如前面提到的超螺旋及線性DNA對瞬時和穩(wěn)定轉染的影響。如果基因產物對細胞有毒性作用，轉染也很難進行，因此選擇組成或可調控，強度合適的啟動子也很重要，同時做空載體及其它基因的相同載體構建的轉染正對照可排除毒性影響的干擾。脂質體可以和帶負電荷的核酸結合后重新形成復合物。鄭州細胞高效轉染試劑價格

脂質體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中。太原正規(guī)細胞高效轉染試劑哪里買

細胞轉染之PEI 轉染法：1.細胞分盤：通過胰酶消化收集細胞，用適當的完全培養(yǎng)基以 1×105 至 4×105細胞/cm2 的密度平鋪細胞于 35 mm 培養(yǎng)皿上（根據實驗需要選擇培養(yǎng)皿，使細胞貼壁后所占面積達到培養(yǎng)皿總面積的 70－90％）。將細胞置于含 5％CO2 的 37℃溫箱中孵育 8-24 h，當細胞貼壁完全后即可開始轉染。轉染前 2 h 換液（用 1.5 ml 無血清培養(yǎng)基置換舊的培養(yǎng)基）。注：PEI轉染法對細胞生長有克制作用，在換液前細胞幾乎不生長，所以需要密度比較大時做轉染。2.制備PEI-DNA 混合物以 35 mm 組織培養(yǎng)皿用 240 μl 反應總體積為例。先在無菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入質粒 DNA（總量 1-3 μg 為佳），混勻后加入等體積 PEI工作液，充分混勻后室溫靜置 20-30 min ，較后將這 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述單層細胞的細胞培養(yǎng)基中，輕輕搖動平皿混勻后置于含 5％ CO2的 37℃溫箱孵育。太原正規(guī)細胞高效轉染試劑哪里買