杭州北京細胞高效轉(zhuǎn)染試劑

來源: 發(fā)布時間:2022-08-06

細胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾個大坑:1.試劑過期有時候轉(zhuǎn)染效率低下,還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當(dāng)年做轉(zhuǎn)染整整半年,百思不得其解。較后發(fā)現(xiàn),原來是Lipofectamine2000過期了。換了之后,立馬成功。根據(jù)我的經(jīng)驗,盡量使用開封半年內(nèi)的,因為過了半年后,就算沒有過失效期,但是細胞毒性較大增加,而轉(zhuǎn)染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢,影響實驗進度哈。2.未加血清轉(zhuǎn)染后未及時加入血清,會導(dǎo)致細胞大量死亡。一般要在轉(zhuǎn)染后的4-6小時換液且換為有血清的培養(yǎng)基。根據(jù)毛博的經(jīng)驗,其實也可以在原來的無血清培養(yǎng)基里面滴加血清。這個時候,較好不要換液,不要打擾細胞,讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加入血清。過早的話,會引起未轉(zhuǎn)染的細胞瘋狂生長。那么,什么是較佳時機呢?在20%的細胞變圓的時候,就是加血清的較佳時機。表達水平與位臵無關(guān),不會受到周圍染色體元件的影響。杭州北京細胞高效轉(zhuǎn)染試劑

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細胞轉(zhuǎn)染常用步驟:1.轉(zhuǎn)染試劑的準備①將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。②震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,使用前還需震蕩。2.選擇合適的混合比例(1:1-1:2/脂質(zhì)體體積:DNA質(zhì)量)來轉(zhuǎn)染細胞。在一個轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,再次震蕩。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。5.加入混合液,將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。6.到時后,根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液,之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時無錫重慶細胞高效轉(zhuǎn)染試劑當(dāng)復(fù)合物接近細胞膜時,通過內(nèi)吞作用形成內(nèi)體進入細胞。

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如何高效率實現(xiàn)細胞轉(zhuǎn)染:陽離子脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑脂質(zhì)轉(zhuǎn)染試劑,以其適用宿主范圍廣,操作簡便,對細胞毒性小,轉(zhuǎn)染效率高受到研究者們的青睞。脂質(zhì)體(liposome)是一種人工膜,在水相中形成具有雙分子層結(jié)構(gòu)的球形封閉囊泡。脂質(zhì)體可以和帶負電荷的核酸結(jié)合后重新形成復(fù)合物,當(dāng)復(fù)合物接近細胞膜時,通過內(nèi)吞作用形成內(nèi)體(endosomes)進入細胞,通過緩沖液的作用以及脂質(zhì)與內(nèi)體膜融合,增大內(nèi)體的內(nèi)部滲透壓,使內(nèi)體結(jié)構(gòu)破壞,釋放出核酸。隨后DNA復(fù)合物被釋放進入細胞核內(nèi)。對于普通細胞系,一般的瞬時轉(zhuǎn)染方法多采用脂質(zhì)體法。利用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法較重要的就是防止其毒性,因此脂質(zhì)體與質(zhì)粒的比例,細胞密度以及轉(zhuǎn)染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素,通過實驗優(yōu)化合適的轉(zhuǎn)染條件對于轉(zhuǎn)染效率的提高很重要。

細胞轉(zhuǎn)染的常用方法:磷酸鈣共沉淀原理:該法可用于瞬時或穩(wěn)定轉(zhuǎn)染。然而因其對pH、溫度和緩沖液鹽濃度的微小變化十分敏感,所得結(jié)果容易出現(xiàn)差異,且對許多類型的細胞培養(yǎng)物(尤其是原代細胞)具有細胞毒性,轉(zhuǎn)染效率較差。實驗步驟:將核酸與氯化鈣在磷酸鹽緩沖液中混合,同時控制好pH、溫度等條件→室溫孵育,生成濃縮DNA的極小不溶性顆粒沉淀→將顆粒型沉淀分散到細胞中,促進DNA粘附在細胞表面→共沉淀通過內(nèi)吞作用進入胞漿→分析細胞瞬時基因表達或者選擇穩(wěn)定性傳染。是目前實驗室較方便的轉(zhuǎn)染方法之一,其轉(zhuǎn)染率較高,優(yōu)于磷酸鈣法。

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細胞轉(zhuǎn)染的注意事項:血清A、DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物形成時不能含血清,因為血清會影響復(fù)合物的形成。B、一般細胞對無血清培養(yǎng)可以耐受幾個小時沒問題,轉(zhuǎn)染用的培養(yǎng)液可以含血清也可以不加,但血清一度曾被認為會降低轉(zhuǎn)染效率,轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進行優(yōu)化。C、對于對血清缺乏比較敏感的細胞,可以使用營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基,或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清。對血清缺乏比較敏感的貼壁細胞,建議使用**轉(zhuǎn)染試劑。有條件的話,可以用無血清培養(yǎng)基代替PBS洗細胞兩遍,注意洗的時候要輕,靠邊緣緩緩加入液體,然后不要吹吸細胞而是轉(zhuǎn)動培養(yǎng)板讓液體滾動在細胞表面。如果洗的太厲害,細胞又損失一部分,加了脂質(zhì)體后,細胞受影響就更大了,死亡細胞會增多一般的瞬時轉(zhuǎn)染 方法多采用脂質(zhì)體法。溫州正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑銷售廠家

脂質(zhì)體可以和帶負電荷的核酸結(jié)合后重新形成復(fù)合物。杭州北京細胞高效轉(zhuǎn)染試劑

細胞轉(zhuǎn)染的常用方法:磷酸鈣共沉淀原理:該法可用于瞬時或穩(wěn)定轉(zhuǎn)染。然而因其對pH、溫度和緩沖液鹽濃度的微小變化十分敏感,所得結(jié)果容易出現(xiàn)差異,且對許多類型的細胞培養(yǎng)物(尤其是原代細胞)具有細胞毒性,轉(zhuǎn)染效率較差。實驗步驟:將核酸與氯化鈣在磷酸鹽緩沖液中混合,同時控制好pH、溫度等條件→室溫孵育,生成濃縮DNA的極小不溶性顆粒沉淀→將顆粒型沉淀分散到細胞中,促進DNA粘附在細胞表面→共沉淀通過內(nèi)吞作用進入胞漿→分析細胞瞬時基因表達或者選擇穩(wěn)定性傳染杭州北京細胞高效轉(zhuǎn)染試劑