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來源： 發(fā)布時間：2024-07-24

ChIP（染色質(zhì)免疫沉淀）實驗是一種強大的技術(shù)，用于研究蛋白質(zhì)與DNA之間的相互作用，尤其是在轉(zhuǎn)錄調(diào)控、DNA修復、復制以及表觀遺傳學領(lǐng)域。然而，像所有實驗技術(shù)一樣，ChIP實驗也有其優(yōu)點和缺點。
ChIP實驗的優(yōu)點：
1. 體內(nèi)反應的反映：ChIP提供了一種在體內(nèi)研究蛋白質(zhì)與DNA相互作用的方法，能夠真實、完整地反映結(jié)合在DNA序列上的靶蛋白的調(diào)控信息。
2. 全基因組覆蓋：ChIP技術(shù)可以覆蓋整個基因組，提供關(guān)于蛋白質(zhì)-DNA相互作用的視圖。
3. 適用于多種蛋白質(zhì)：ChIP可以用來研究組蛋白修飾、轉(zhuǎn)錄因子以及其他DNA結(jié)合蛋白。
ChIP實驗的缺點：
1. 實驗步驟繁瑣。
2. 需要大量起始材料：ChIP實驗通常需要大量的細胞或組織作為起始材料。
3. 交聯(lián)的影響：使用交聯(lián)劑可能會改變蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)，從而影響抗體的識別和蛋白質(zhì)-DNA的相互作用。
4. 染色質(zhì)碎裂的分辨率：染色質(zhì)碎裂的效率和分辨率直接影響ChIP的準確性，需要優(yōu)化以獲得結(jié)果。
5. 抗體質(zhì)量：抗體的質(zhì)量對實驗結(jié)果至關(guān)重要，但高質(zhì)量、特異性強的抗體可能難以獲得或成本較高。
免疫沉淀技術(shù)Co-IP的原理是什么？南京Co IP免疫沉淀外包公司

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免疫沉淀技術(shù)（Immunoprecipitation, IP）的實驗步驟通常包括以下幾個關(guān)鍵環(huán)節(jié)：
1. 細胞裂解：首先需要收集細胞并裂解它們，以釋放細胞內(nèi)的蛋白質(zhì)。這通常通過添加含有蛋白酶抑制劑的裂解緩沖液來完成，以防止蛋白質(zhì)降解。
2. 裂解物上清：裂解后的細胞混合物通常需要通過離心來去除未破碎的細胞碎片和未裂解的細胞，從而獲得上清。
3. 抗體的添加：將特定于目標蛋白的抗體加入到裂解物中。這些抗體將特異性地結(jié)合到目標蛋白上。
4. 免疫復合物的形成：抗體與目標蛋白結(jié)合形成免疫復合物。
5. 免疫復合物的捕獲：使用Protein A/G結(jié)合的磁珠來捕獲免疫復合物。
6. 洗滌：捕獲免疫復合物后，需要用裂解/洗滌緩沖液多次洗滌，以去除未結(jié)合的蛋白質(zhì)和其他污染物。
7. 洗脫：免疫復合物可以通過加入SDS樣品緩沖液進行洗脫，這將導致抗體和抗原變性并從珠子上釋放下來，或者使用低pH緩沖液進行溫和洗脫，以保持蛋白質(zhì)的天然構(gòu)象。
8. 分析：洗脫后的樣品可以通過SDS-PAGE凝膠電泳、Western blot等方法進行分析，以驗證目標蛋白的存在和狀態(tài)。
廣州Protein AG免疫沉淀磁珠的選擇免疫沉淀技術(shù)Co-IP的實驗方法。

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ChIP（染色質(zhì)免疫沉淀）實驗是一種用于研究蛋白質(zhì)與DNA相互作用的技術(shù)。以下是ChIP實驗的實驗方法概述：
1. 交聯(lián)：將細胞與交聯(lián)劑（如1%甲醛）孵育，通常在室溫下進行10-15分鐘。
2. 終止交聯(lián)：添加甘氨酸以終止交聯(lián)反應，孵育5分鐘。
3. 收集細胞：通過離心收集細胞，并用PBS洗滌以去除交聯(lián)劑。
4. 細胞裂解：使用裂解緩沖液裂解細胞，釋放染色質(zhì)。
5. 染色質(zhì)剪切：使用超聲波或酶消化將染色質(zhì)剪切成適當大小的片段。
6. 免疫沉淀：將剪切后的染色質(zhì)與特異性抗體孵育，然后添加蛋白A/G磁珠。
7. 洗滌：用低鹽、高鹽和LiCl洗滌液洗滌磁珠，去除非特異性結(jié)合物。
8. 洗脫：用洗脫緩沖液洗脫DNA。
9. 逆轉(zhuǎn)交聯(lián)：用蛋白酶K處理，然后在65°C下加熱過夜以逆轉(zhuǎn)交聯(lián)。
10. DNA純化：使用商業(yè)試劑盒或標準酚/氯仿方法純化DNA。
11. 分析：使用qPCR分析富集的DNA，或進行測序以確定蛋白質(zhì)結(jié)合位點。

免疫沉淀ChIP實驗中磁珠還是瓊脂糖珠的選擇取決于客戶實驗情況。
瓊脂糖珠海綿狀的結(jié)構(gòu)  (直徑 50-150 μm)  可以結(jié)合抗體  (繼而結(jié)合靶蛋白) ，它能夠直接高效、快速結(jié)合抗體，而不需借助特殊的專業(yè)設備。瓊脂糖珠呈多孔結(jié)構(gòu)，這使得它們擁有更大的表面積可與蛋白質(zhì)相互接觸，具有更高的結(jié)合載量。
與瓊脂糖珠不同，磁珠是固體，抗體的結(jié)合限于磁珠的表面。磁珠 (直徑 1-4 μm) 明顯小于瓊脂糖珠 ，盡管磁珠沒有多孔中心增加結(jié)合能力，但每體積的磁珠數(shù)量比瓊脂糖珠多，使磁珠擁有足夠的抗體結(jié)合表面積滿足高容量的抗體結(jié)合。
簡而言之，瓊脂糖珠的結(jié)合能力較強，而磁珠在得率，可重復性以及自動化方面有明顯的優(yōu)勢。
免疫沉淀技術(shù)IP的優(yōu)缺點是什么？

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真核生物的基因組 DNA 以染色質(zhì)（Chromatin）的形式存在。因此，研究蛋白質(zhì)與 DNA 在染色質(zhì)環(huán)境中的相互作用是闡明真核生物基因表達機制的基本途徑，而染色質(zhì)免疫共沉淀（Chromatinimmunoprecipitation，ChIP）技術(shù)是目前公認的研究此相互作用的選擇，是真核生物基因表達機制研究中不可或缺的技術(shù)之一。
它的基本原理是在活細胞狀態(tài)下，固定蛋白質(zhì)-DNA（染色質(zhì)）復合物，并將其切斷為一定長度范圍內(nèi)的染色質(zhì)小片段，然后通過免疫學方法（抗體親和）沉淀此復合體，特異性地富集目的蛋白結(jié)合的 DNA，通過對目的片段的純化與后期檢測，從而獲得蛋白質(zhì)與 DNA 相互作用的信息。
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免疫沉淀純化所得抗原純度低一般有多種原因：
1. 非特異性蛋白污染
如果洗脫所得抗原純度較低，則有幾種方法可以進行優(yōu)化。在結(jié)合或洗滌緩沖液中加入去污劑或其他可以降低非特異性結(jié)合的組分。使用普通微珠預純化樣本還可以降低非目標分子的共純化。此外，還可以使用無關(guān)蛋白 (如BSA) 封閉微珠 。
2. 抗體污染
使用蛋白A、G或A/G的經(jīng)典免疫沉淀實驗中會出現(xiàn)抗體與抗原共洗脫的情況。如果共洗脫會影響下游分析，則需要使用抗體通過共價連接固定至微珠的方法進行實驗，如Pierce 直接 IP 或交聯(lián) IP 的形式。
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