外泌體mrna

建立記錄各論文實(shí)驗(yàn)條件的數(shù)據(jù)庫(kù)也可作為規(guī)避混亂的方法之一。一方面，隨著EV研究倍受世界矚目，各國(guó)啟動(dòng)了大型研究項(xiàng)目。美國(guó)啟動(dòng)NIH戰(zhàn)略性大型項(xiàng)目（ExtracellularRNACommunication），國(guó)際厲害性學(xué)會(huì)——Gordon和KeystoneSymposia也從2016開(kāi)始成立會(huì)議小組。受到歐洲藥物研究開(kāi)發(fā)公司“創(chuàng)新藥物倡議組織（IMI）”的支持推進(jìn)的CANCER-ID項(xiàng)目，也包含EV研究在內(nèi)。2017年日本選定了EV研究為文部科學(xué)省研究開(kāi)發(fā)戰(zhàn)略的目標(biāo)之一，期待會(huì)加速今后的研究發(fā)展。無(wú)論如何，今后EV研究的根本就是必須有強(qiáng)有力的研究方法和技術(shù)，而PS親和法有望成為其中之一。外泌體具有抗原提呈、免疫逃逸、誘導(dǎo)正常細(xì)胞轉(zhuǎn)化、促進(jìn)瘤子發(fā)生和轉(zhuǎn)移等作用。外泌體mrna

外泌體（Exosome）介導(dǎo)瘤血管的形成和轉(zhuǎn)移。外泌體（Exosome）能將自身的細(xì)胞因子IL-8和VEGF釋放到細(xì)胞外，作用于內(nèi)皮細(xì)胞膜表面受體，導(dǎo)致瘤血管快速形成并較終通過(guò)發(fā)生EMT過(guò)程促進(jìn)瘤的遷移。瘤細(xì)胞來(lái)源的外泌體（Exosome）中含有血管生長(zhǎng)素、血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子等，這些細(xì)胞因子以不同的作用方式促進(jìn)瘤血管的形成，如VEGF通過(guò)喚醒磷酸酯酶C和第二信使的形成，誘導(dǎo)纖維蛋白溶解酶原活化物的表達(dá)，使得基底膜降解，從而促進(jìn)瘤細(xì)胞的遷移。山東外泌體脂質(zhì)組學(xué)外泌體產(chǎn)生相關(guān)的重要分子：Ral、ARF6、PLD2、RAB家族。

超速離心是外泌體提取較常用的方法也被認(rèn)為是金標(biāo)準(zhǔn)，主要是根據(jù)外泌體的沉降系數(shù)、大小和形狀將其分離出來(lái)。首先4℃低速離心（300-500g，10min）去除死細(xì)胞以及細(xì)胞碎片，隨后以較高離心速度(2000xg，10min)去除生物聚合物以及凋亡小體，然后用10000xg,30min離心去除大型囊泡，結(jié)尾以超速離心沉淀外泌體。通過(guò)懸浮以及重復(fù)超速離心去除外泌體沉淀中的非外泌體蛋白。超速離心法具有操作簡(jiǎn)單、不易被分離試劑污染、獲得的外泌體數(shù)量較多等優(yōu)點(diǎn)。但是此方法需要昂貴的超高速離心機(jī)，每次處理的樣本量較小，費(fèi)時(shí)，電鏡鑒定時(shí)還發(fā)現(xiàn)外泌體易聚集成塊，且上清中仍能檢測(cè)到大型囊泡，純度不高，另外高速離心會(huì)損傷外泌體影響下游實(shí)驗(yàn)。

密度梯度離心法根據(jù)在蔗糖、碘海醇或碘克沙醇等惰性溶液中的浮力密度將外泌體分成特定的層，目前普遍應(yīng)用的是蔗糖，這種方法可以成功地將亞細(xì)胞成分（例如過(guò)氧化物酶體，線粒體和核內(nèi)體）分離到密度梯度溶液中的不同層中。樣品被放置在梯度的頂部，當(dāng)施加離心力時(shí)，樣品中的顆粒以獨(dú)特的速率通過(guò)梯度，該梯度以從上到下的密度增加。樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集，隨后可以通過(guò)分餾收集，密度梯度超速離心對(duì)從蛋白質(zhì)聚集體和非膜顆粒中分離出外泌體非常有效。此方法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣、費(fèi)時(shí)且會(huì)造成外泌體損失。外泌體是指包含了復(fù)雜 RNA 和蛋白質(zhì)的小膜泡 (30-150nm)。

外泌體的提取主要包括以下幾種方式：1、免疫磁珠法，這種方法可以保證外泌體形態(tài)的完整，特異性高、操作簡(jiǎn)單、不需要昂貴的儀器設(shè)備，但是非中性pH和非生理性鹽濃度會(huì)影響外泌體生物活性，不便進(jìn)行下一步的實(shí)驗(yàn)。2、PS親和法，該方法將PS（磷脂酰絲氨酸）與磁珠結(jié)合，利用親和原理捕獲外泌體囊泡外的PS。該方法與免疫磁珠法相似，獲得的外泌體形態(tài)完整，純度較高。由于不使用變性劑，不影響外泌體的生物活性，外泌體可用于細(xì)胞共培養(yǎng)和體內(nèi)注射。3、色譜法，這種方法分離到的外泌體在電鏡下大小均一，但是需要特殊的設(shè)備，應(yīng)用不普遍。外泌體作為核酸的藥物遞送載體。應(yīng)用Tim4的外泌體強(qiáng)結(jié)合能力，可用ELISA或FACS高靈敏度定性檢測(cè)、定量分析外泌體。宇枚博

對(duì)外泌體的分析和檢測(cè)可以輔助疾病的早期診斷、療效評(píng)價(jià)和預(yù)后分析。外泌體mrna

DLS使用由于粒子的布朗運(yùn)動(dòng)而產(chǎn)生的波動(dòng)散射光的強(qiáng)度來(lái)估計(jì)外泌體顆粒的大小分布及其zeta電位。DLS樣品制備方便，只需要簡(jiǎn)單的過(guò)濾，測(cè)量速度較快，需要的樣品體積較少。但由于動(dòng)態(tài)光散射技術(shù)是基于光強(qiáng)測(cè)量，散射光的強(qiáng)度與粒徑的六次方成正比，使得當(dāng)測(cè)量多種粒徑的混合懸浮液時(shí)，通常會(huì)偏向于檢測(cè)較大粒徑產(chǎn)生的散射光，比較難檢測(cè)到較小顆粒。所以DLS不適合對(duì)粒徑分布較寬的外泌體樣本的測(cè)量，只適合尺寸較為均一的外泌體樣本，并且無(wú)法測(cè)量樣品中外泌體的濃度。外泌體mrna

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